C2C12成肌管分化模型
构建骨骼肌研究平台
【当98%的重复实验失败后,我们找到了颠覆细胞研究的**答案】
全球首款功能验证细胞库如何为CNS级研究保驾护航
| C2C12细胞(经成肌管分化能力验证) |
C2C12成肌管分化模型广泛应用于肌肉疾病研究(如肌营养不良症)、运动医学和肌肉组织工程等领域。C2C12细胞在高浓度胎牛血清(10%~20%)中保持单核增殖状态,在低浓度马血清(1%~2%)中细胞退出细胞周期(G₀期)并启动肌源性分化程序,最终细胞融合形成多核肌管。
C2C12作为研究肌肉理想的细胞模型,在 实验研究中常诱导其分化为多核肌管。成 肌分化在肌肉再生中起重要作用,它是通 过一种高度协调的序列程序来产生成熟的 骨骼肌的过程。海星生物的C2C12小鼠成 肌细胞每个批次均经过成管能力验证。
海星生物第三代功能验证C2C12细胞—为骨骼肌构建量身定制的高效工具!
批批均进行成肌管验证

技术护航:从细胞到数据,全程无忧
严格质控:通过ISO 9001认证
支原体检测阴性,确保实验安全!
小鼠成肌C2C12细胞(经成肌管分化验证)注意要点
1. 使用新鲜复苏的C2C12细胞(建议复苏后传代2-3次后再用于实验),C2C12细胞生长速度快(倍增时间:~20小时),容易分化,建议密度达70%时传代。
2. 待细胞生长至汇合度为80%左右时,即可进行诱导分化,不要让细胞长得太满甚至开始融合,影响后续成肌分化率。
3. 细胞消化完全后再吹打混匀,不要用枪头把没有消化好的细胞吹下来,以免细胞成团。
4. 每24h更换一次诱导分化培养基,在显微镜下观察细胞形态和生长状况。诱导分化成功时,可以看见肌管表现为厚的管状结构,有时为多核。
5. 若加入分化培养基后,细胞仍然继续生长,可用吉姆萨染色验证是否有分化了的肌纤维。
6. 成肌分化过程中会有少量细胞凋亡,属于正常现象。
7. 使用优质胎牛血清对C2C12细胞的分化实验尤为重要,血清中的内毒素超标会导致细胞在培养过程中发生自分化,推荐使用HyCyte®C2C12细胞专用培养基,或超低内毒素的HyCyte®预筛选胎牛血清,货号FBP-C520。
8. 诱导全程保持37℃、5% CO₂环境,观察时需尽量缩短细胞在培养箱外的时间,避免温度波动。诱导前后更换培养基时,可用PBS轻柔洗涤2次,去除多余的死细胞,避免影响后续拍照。
9. 培养基在使用前需37℃水浴加热,避免过冷影响细胞成肌管效果。
10. 染色液使用前需37℃水浴加热,若发现染色液析出请勿使用。
11. 换液与PBS清洗操作时,液体应从孔板边缘缓慢滴加,不可直接从中央部分滴加,避免力度过大损害细胞结构导致细胞卷边或脱落。