【海星第三代功能验证细胞库】小鼠巨噬细胞单核细胞白血病细胞RAW264.7(经未分化验证)
小鼠巨噬细胞单核细胞白血病细胞
RAW264.7(经未分化验证)
RAW264.7细胞系是小鼠单核细胞/巨噬细胞的一种常用永生化细胞系，是破骨细胞、炎症研究最常用的体外模型之一，广泛应用于以下领域：免疫和炎症研究，药物和毒性筛选，分子生物学实验等。最常见的应用模型为诱导巨噬细胞模型。
HyCyte®小鼠单核巨噬细胞白血病细胞(经未分化验证)RAW264.7细胞经过严格验证，具备强大的分化潜能，轻松实现M1（促炎）与M2（抗炎/修复）表型精准诱导，形态、标志物、功能全维度响应，精准匹配您的研究需求。
RAW264.7(经未分化验证)实验流程
RAW264.7（小鼠单核巨噬细胞白血病细胞），巨噬细胞极化是指巨噬细胞根据所处微环境的不同，表现出不同的功能状态，主要分为M1型（经典激活型）和M2型（替代激活型）两种类型。M1型巨噬细胞主要参与炎症反应和抗肿瘤免疫，而M2型巨噬细胞主要参与组织修复和免疫抑制。
1. 复苏细胞
①准备一支15 mL离心管，在离心管中加入5 mL左右的预热好的HyCyte®RAW264.7细胞专用培养基(TCM-G766)。
② 取出细胞，37℃水浴快速解冻后吸取细胞悬液至离心管中。
③ 离心（1000 rpm, 5 min），弃上清，用HyCyte®RAW264.7细胞专用培养基重悬，接种于对应的贴壁培养皿或培养瓶中。
④ 置于37℃、5% CO₂培养箱中培养，每2-3天传代（汇合度达80%即可传代）。
2. 细胞铺板
① 预冷的PBS消化RAW264.7细胞，计数计活率，活率应高于80%。
② 将RAW264.7细胞以5×10^5 cells/mL密度接种于6孔板中（每孔2 mL），静息约4小时以上使细胞贴壁，过夜贴壁效果更佳。
③ 确认细胞完全贴壁后，可进行M1与M2分型的诱导。
3. M1/M2分型极化
① M1极化：无需换液，直接在培养基中加入终浓度为20~40 ng/mL的 IFN-γ和200~500 ng/mL的LPS；
② M2极化：无需换液，直接在培养基中加入终浓度为20~40 ng/mL的 IL-4和20~40 ng/mL的 IL-13。
③ 继续培养48 - 72小时。
④ 显微镜下观察M1巨噬细胞通常呈现不规则的形态，细胞体积增大，细胞质丰富，并出现伪足；
⑤ 显微镜下观察M2巨噬细胞通常呈现纺锤形的形态，细胞体积相对较小，细胞质较少。
M1分型极化
M2分型极化
技术护航：从细胞到数据，全程无忧
【海星第三代功能验证细胞库】小鼠巨噬细胞单核细胞白血病细胞RAW264.7(经未分化验证)
1. 验证体系全面且严苛
突破传统仅 STR 鉴定、STR + 支原体检测的验证模式，采用 STR 鉴定 + 支原体检测 + M1/M2 分型极化功能验证的三级体系，文献级功能验证一次性通过率＞90%，远优于一代、二代细胞库 60% 的批次差异率，确保细胞功能稳定可复现。
2. 极化特性精准可验证
经实验验证，该细胞可精准实现 M1、M2 两种极化分型：
M1 极化（IFN-γ+LPS 诱导）：细胞呈不规则形态，CD86 + 占比达 69.34%，高表达 TNF-α、IL-1β 等促炎因子，吞噬能力强； M2 极化（IL-4+IL-13 诱导）：细胞呈纺锤形，CD206 + 占比达 28.70%，高表达 IL-10、TGF-β 等抗炎因子，具备组织修复与血管生成相关功能；未诱导状态下CD86+、CD206 + 占比分别仅 0.01%、0.14%，极化分型特征无交叉干扰。
3. 应用场景覆盖全维度
依托 ClonePlus™高通量基因编辑 + 自动化克隆技术平台，细胞株规模达 30000 + 基因编辑株，可覆盖从巨噬细胞活化机制、炎症信号通路研究，到抗肿瘤、抗炎药物筛选的基础研究至药物开发全场景。
4. 交付与使用体验优质
采用德国纳米技术干冰桶运输，搭配详细实验手册与完整验证报告；细胞培养操作便捷，复苏活率＞80%，无需额外优化即可开展极化实验，大幅降低科研时间成本。
