【海星第三代功能验证细胞库】bEnd.3经体外血管形成实验验证

2025-12-04

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【海星第三代功能验证细胞库】

解锁实验高精准度
STR只是起点,功能才是答案
【当98%的重复实验失败后,我们找到了颠覆细胞研究的**答案】
全球首款功能验证细胞库如何为CNS级研究保驾护航

第七期:小鼠脑管内皮细胞(bEnd.3

第七期:小鼠脑微血管内皮细胞(bEnd.3)

海星第三代功能验证细胞—bEnd.3细胞

经体外血管形成实验验证

STR + 支原体 + 功能三级验证
成管能力稳定,批次差异<10%
覆盖基础研究到药物开发的全场景需求

bEnd.3细胞是一种源自BALB/c小鼠脑微血管内皮的转化细胞系,具有典型的内皮细胞特性。bEnd.3细胞通过转染表达多瘤病毒中T抗原的NTKmT逆转录病毒载体,获得了内皮细胞特征,其形态呈现内皮细胞样式,喜贴壁生长。通过观察von Willebrand因子的表达以及荧光标记的低密度脂蛋白(LDL)的摄取,可以验证其内皮细胞特性。

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bEnd.3细胞系血管形成实验-形态学结果



小鼠脑微血管内皮细胞(bEnd.3)

(经体外血管形成实验验证)培养注意要点

1. bEnd.3细胞最常遇到的问题就是细胞形态变化和难消化;

2. 细胞形态:bEnd.3细胞本身生长较慢,在低密度时会呈现不规则细胞形态,高密度时则呈规则纤维状,所以若在培养过程中发现细胞形态异常,则有可能是细胞密度低,建议细胞铺满密度较高时传代。

3. 细胞培养过程中形态多样,低密度时容易出现放射状细胞,看似已经铺满瓶底,其实细胞量较少,需要细胞胞体排列紧密的时候进行传代;

4. 细胞培养过程中避免频繁换液,可以每隔2-3天换液或者半量换液一次;

5. 培养过程中会产生10%左右活的单颗漂浮细胞,贴壁细胞密度偏低时,注意收集悬浮细胞,贴壁细胞密度偏高时,可以换液时丢弃;

6. 接种量对细胞生长有影响,接种量过低细胞会有增殖缓慢,漂浮过多的现象,请注意控制传代比例;

7. 细胞对温度和pH较敏感,传代或换液前培养基可以常温复温4小时以上;避免使用pH改变(偏酸:颜色偏黄;偏碱:颜色偏紫红)的培养基;

8. 细胞传代过程中若出现单次消化时间过长,可进行分次消化,切不可将细胞强行吹下来,以避免吹打造成细胞机械损伤。

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小鼠脑微血管内皮细胞(bEnd.3)

(经体外血管形成实验验证)常见问题及解决方法


1. 培养过程中出现黑点正常吗?

细胞在培养过程中会分泌一定量的细胞代谢物,在镜下通常呈现出规律运动的黑点,若黑点没有增多,培养基未变浑浊且细胞生长正常,可通过换液去除,不影响细胞的正常生长和其余实验操作。

2. 培养过程中细胞生长缓慢正常吗?

若为冻存管复苏细胞的1~2代,细胞生长缓慢属于正常状态;更换培养基也会导致细胞生长缓慢,需适应1~2代即可恢复常规生长速度;若一直无改善,考虑细胞是否代次过高或是否有支原体引入。

3. 细胞消化时间不一样正常吗?

bEnd.3细胞培养时间越长越难消化,培养4天传代,一般消化3-5分钟;培养7天传代,一般消化5-10分钟。具体消化时间以显微镜下观察细胞状态为准。

如遇到消化困难不必担心,可通过分次消化的方式解决,具体操作方法如下(以T25瓶细胞为例):

(1) 吸出原培养液;

(2) 加入2mL左右PBS,轻轻晃动培养瓶润洗细胞,吸出PBS丢弃;

(3) 加入1mL左右胰酶,轻轻晃动培养瓶使之浸润所有细胞;

(4) 放入培养箱消化,消化3-5分钟(根据具体细胞稍作延长或缩短),显微镜下看到细胞开始漂浮,可以加入2mLPBS,晃动培养瓶使细胞悬浮,不要吹打剩下的贴壁细胞;

(5) 吸出培养瓶内的PBS和细胞悬液,转移到无菌离心管中,在离心管中加入3mL含血清的培养基终止消化并吹散细胞,使细胞尽量呈单颗细胞的悬浮液;

(6) 原培养瓶中加入0.5mL胰酶,晃动培养瓶浸润细胞,放入培养箱继续消化,直到细胞块中间全部收缩变圆,晃动培养瓶可脱落;

(7) 用3mL含血清的培养基终止消化,将瓶底的细胞全部吹下,并轻轻吹吸分散细胞呈单颗;

(8) 收集细胞悬液与**次消化下来的细胞合并到一个离心管;

(9) 离心收集细胞沉淀,1100rpm/min 4分钟,离心完吸出上清丢弃;

(10) 加入新鲜培养基,吹打几下混匀细胞,按需接种到新培养瓶,补足培养基,拧松瓶盖或使用透气瓶盖进行培养;

(11) 检查培养箱二氧化碳,温度和水盘。


技术护航:从细胞到数据,全程无忧


海星生物第三代功能验证细胞库的 bEnd.3 细胞,通过STR 鉴定、支原体检测、体外血管形成实验三级验证体系,确保细胞身份精准、无污染且功能稳定。

  • 验证更全面:采用 STR + 支原体 + 功能的三级验证体系,确保文献级功能稳定性。

  • 批次一致性高:不同批次细胞的体外成管效率差异<10%,避免因细胞功能波动导致的实验误差。

  • 配套支持完善:提供详细的体外血管形成实验操作手册及验证报告,同时采用德国纳米技术干冰桶运输,保障细胞复苏存活率>85%。
  • 应用适配性广:除血管形成研究外,可直接用于血脑屏障通透性检测、药物转运实验等,覆盖基础研究到药物开发的全场景需求。
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